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| 规格 | 价格 | 库存 | 数量 |
|---|---|---|---|
| 25mg | ￥ 520.00 | 100 | |
| 50mg | ￥ 985.00 | 100 | |
| 100mg | ￥ 1650.00 | 100 |
| 别名 | NSC 659853, 2-ME2 ；2-甲氧雌二醇 |
| 产品名 | 2-Methoxyestradiol (2-MeOE2) |
| CAS号 | 362-07-2 |
| 目录号 | D915084 |
| 化学式 | C₁₉H₂₆O₃ |
| 分子量 | 302.41 |
| 溶解度 | ≥ 15.25 mg/mL in DMSO, ≥ 24.25 mg/mL in EtOH with ultrasonic |
| 靶点 | Apoptotic, antiproliferative and antiangiogenic agent |
| 储存条件 | Store at -20°C |
| 用途 | 仅供科学研究使用!不能用于人体及动物治疗 |
| 纯度 | ＞99.7% |
靶点及简介 ：2-Methoxyestradiol是血管生成抑制剂和凋亡诱导剂，具有有效的抗肿瘤活性。 2-Methoxyestradiol也可破坏微管的稳定。
| 分子量 | 302.41 | ||
|---|---|---|---|
| 化学式 | C19H26O3 | ||
| CAS号 | 362-07-2 | ||
| 储存条件 | 3年 | -20°C | 粉状 |
| 1年 | -80°C | 溶于溶剂 | |
体外研究：
2-甲氧基雌二醇（5-100μM）以浓度依赖性方式抑制纯化微管蛋白的装配，在200μM2-甲氧基雌二醇（2ME2）下具有最大抑制（60％）。然而，对于含有微管相关蛋白的微管，解聚微管需要显着更高的2-甲氧基雌二醇浓度，并且在500μM2-甲氧基雌二醇时聚合物质量仅减少13％。 4μM2-甲氧基雌二醇使平均生长速率降低17％，动态性降低27％。对于有丝分裂停滞的IC50的活间期MCF7细胞（1.2μM），2-甲氧基雌二醇显着抑制平均微管生长速率，持续时间和长度，以及整体动态性，与其体外作用一致，并且没有任何可观察到的微管解聚。 2-甲氧基雌二醇在许多活跃分裂的细胞类型中诱导G2-M阻滞和凋亡，同时保留静止细胞。 2-甲氧基雌二醇在秋水仙碱位点处或附近与微管蛋白结合，抑制微管组装，并且已显示高浓度解聚细胞中的微管。 2-甲氧基雌二醇诱导G2-M阻滞和细胞凋亡，许多活跃分裂也阻断有丝分裂并抑制内皮细胞迁移[1]。 2-甲氧基雌二醇（2-ME）降低缺氧条件下培养的HIF-1α和HIF-2α核染色。当细胞在常氧和缺氧条件下暴露于2-甲氧基雌二醇时，HIF-1α和HIF-2αmRNA水平显着降低。 2-甲氧基雌二醇是一种抗血管生成，抗增殖和促凋亡剂，可抑制HIF-1α蛋白水平及其转录活性。在96小时时，与DMSO处理的细胞（分别为66.2±7.2和101.2±2.3％; p = 0.04）相比，在10μM2-甲氧基雌二醇处理的A549细胞中发现生长速率的显着降低。浓度为10μM的2-甲氧基雌二醇用于凋亡和HIF-1α和HIF-2α表达测定，这是由于当细胞在常氧条件下在72小时温育时发现该浓度的显着性。与较低O2浓度的细胞（5.8±0.2％; p = 0.003
体内研究：
为了研究2ME2对葡萄膜炎发展的影响，将C57BL / 6小鼠随机分成两组并用IRBP肽免疫。 2ME2组从第0天至第13天腹膜内开始2-甲氧基雌二醇（15mg / kg），而对照组给予载体。 2-甲氧基雌二醇（2ME2）组的病变评分为0.30±0.30，显着低于对照组2.09±0.28（p <0.05），每组含5只小鼠[3]。用2-甲氧基雌二醇（60-600mg / kg / d）治疗导致肿瘤生长的剂量依赖性抑制。在2-甲氧基雌二醇处理组中，具有强烈的哌莫胺阳性染色（+++）的细胞百分比显着降低（60mg / kg / d为36.0％，200和600mg / kg / d为0％）与媒介物治疗组（86.5％）。这可能是由于2-甲氧基雌二醇治疗后剂量依赖性地显着抑制肿瘤生长[4]。
激酶实验：
将微管蛋白（2.75 mg / mL）装配成稳态[在100 mM PIPES中含有1 mM EGTA和1 mM MgSO4（PEM100）和1 mM GTP，35°C 45分钟]，含有2-甲氧基雌二醇（最终药物浓度） 1-500μM）。将最终的DMSO和乙醇浓度分别调节至1％和5％。 2-甲氧基雌二醇≤5μM的浓度对微管聚合物质量没有影响，因此大多数实验使用20-500μM的2-甲氧基雌二醇。用2-甲氧基雌二醇孵育30分钟，此时微管解聚最大，微管在35℃离心30分钟，从沉淀中除去上清液。将微管颗粒在0.2M NaOH中溶解过夜，测定上清液和颗粒的蛋白质浓度[1]。
细胞实验：
用绿色荧光蛋白（GFP）-α-微管蛋白稳定转染的MCF7乳腺癌细胞在补充有非必需氨基酸，0.1％青霉素/链霉素，10％胎牛血清和0.4mg / mL G418的DMEM中于37℃培养。 5％的二氧化碳。用GFP-α-微管蛋白进行MCF7细胞的转染。为了评估有丝分裂指数，将细胞以6×104 / 2mL的浓度接种到六孔板中。 48小时后，将细胞在不存在或存在2-甲氧基雌二醇的情况下以100nM至30μM的浓度温育20小时。为了收集漂浮和附着的细胞，收集培养基;用Versene（137mM NaCl，2.7mM KCl，1.5mM KH 2 PO 4,8.1mM Na 2 HPO 4和0.5mM EDTA）冲洗附着的细胞，通过胰蛋白酶消化分离，并加回到培养基中。通过离心收集细胞并用10％福尔马林固定30分钟，在冰冷的甲醇中透化10分钟，并用4'，6-二脒基-2-苯基吲哚染色以显现细胞核。结果是七个实验的平均值和SE，每个实验对每个浓度计数500个细胞。有丝分裂IC50是诱导最大有丝分裂积累一半的药物浓度[1]。
动物实验：
使用小鼠[3] 6~8周龄的C57BL / 6小鼠。 C57BL / 6小鼠在尾部皮下免疫0.1mL，在大腿部位用IRBP抗原复合物皮下免疫0.05mL。同时注射500ng百日咳毒素。这一天定为第0天。然后将小鼠分成4组，每组包含5只小鼠。在0-13天，0-6天和7-13天腹腔注射15mg / kg 2-甲氧基雌二醇或载体。在第14天，在安乐死后收集眼睛或淋巴结。用ip注射载体（60,200或600mg / kg /天的2-甲氧基雌二醇/ Panzem）处理大鼠[4] Fischer 344大鼠（平均体重= 150g，每组n = 6）。在最初的肿瘤细胞注射后第8天开始连续9天。每组使用三只大鼠第二次重复实验。
验证：
参考文献：
| DMSO | 60 mg/mL (198.41 mM) |
| Water | Insoluble |
| Ethanol | Insoluble |
Concentration / Solvent Volume / Mass | 1 mg | 5 mg | 10 mg |
1 mM | 3.31 mL | 16.53 mL | 33.07 mL |
5 mM | 0.66 mL | 3.31 mL | 6.61 mL |
10 mM | 0.33 mL | 1.65 mL | 3.31 mL |
50 mM | 0.07 mL | 0.33 mL | 0.66 mL |
请根据产品在不同溶剂中的溶解度选择合适的溶剂配制储备液。
一旦配成溶液，请分装保存，避免反复冻融造成的产品失效。储备液的保存方式和期限：-80°C 储存时，请在 6 个月内使用，-20°C 储存时，请在 1 个月内使用。（为了提高溶解度，请将管子加热至37℃，然后在超声波浴中震荡一段时间)。
我们确保产品在保持试剂质量的条件下运输。收到产品后，请遵循产品数据表上的存储建议。
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